20min。冷却后在超净工作台内接入2%、4%、6%、水平 8%、10%菌体种子液(菌体活菌浓度为2.5×105CFU/mL)。然后分别置于转速为150r/min、温度为31℃的摇床中培养36h,用高岭土悬浮液分别测定培养液的吸光度,并计算出絮凝率。通过比较在不同接种量条件下絮凝率的大小,得到最佳接种量。1.2.5pH的优化在250mL锥形瓶中各加入100mL产微生物絮凝剂培养基,将pH分别调至3.0、4.0、5.0、6.0、7.0,再将各培养基于121℃高压蒸汽灭菌20min。冷却后在超净工作台内接入6%菌体种子液(菌体活菌浓度为2.4×105CFU/mL)。然后分别置于转速为150r/min、温度为31℃的摇床中培养36h,用高岭土悬浮液分别测定培养液的吸光度,并计算出絮凝率。通过比较在不同pH条件下絮凝率的大小,得到最佳pH。1.2.6培养时间的优化在250mL锥形瓶中各加入100mL产微生物絮凝剂培养基,将pH调至5,再将各培养基于121℃高压蒸汽灭菌20min。冷却后在超净工作台内接入6%菌体种子液(菌体活菌浓度为5.6×105CFU/mL)。然后分别置于转速为150r/min,温度为31℃的摇床中培养12、24、36、48、60、72h,用高岭土悬浮液分别测定培养液的吸光度,并计算出絮凝率。通过比较在不同培养时间条件下絮凝率的大小,得到最佳培养时间。1.2.7正交实验根据单因素的最优培养条件,选取其中絮凝率最高时的培养条件,列出因素水平表(表1)。本实验采用的是L9(34)正交表,按照正交表进行实验,测定絮凝率并对结果进行分析,得出这四种培养条件对絮凝率的影响程度大小次序和最优的正交组合。如表1所示,分别用A、B、C、D来表示温度、培养时间、pH、接种量四种培养条件,每个因素参照各自的最优培养条件选择三个不同的变量。根据L9(34)正交表,测定各组合的絮凝率并记录分析结果,以得出最佳的培养条件组合。1.2.8初始培养条件与优化培养条件的效果比较(1)初始培养条件下制备絮凝剂配制培养基600mL,在自然pH下,于121℃高压蒸汽灭菌20min。冷却后于超净工作台内接入4%菌体种子液(菌体活菌浓度为3.8×105CFU/mL),然后置于温度35℃、转速150r/min的摇A(温度/℃) B(培养时间/h) C(pH) D(接种量/%)
1 29 36 5 5 2 31 48 5.5 6 3 33 54 6 7 床中培养36h。培养结束后,测定原始培养条件下的絮凝率,然后提取出所产的絮凝剂。(2)优化培养条件下制备絮凝剂配制培养基600mL,将pH调至5,于121℃高压蒸汽灭菌20min。冷却后于超净工作台内接入6%菌体种子液(菌体活菌浓度为3.8×105CFU/mL),然后置于温度33℃、转速150r/min的摇床中培养54h。培养结束后,测定优化培养条件下的絮凝率,然后提取出所产的絮凝剂。比较在初始培养条件和优化培养条件下的絮凝率与絮凝剂产量,从而可以得到优化的效果。絮凝剂的提取方法如下:将培养液放入转速为8000r/min的高速离心机中离心10min,取上清液。然后在上清液中加入3倍体积的预冷乙醇(4℃)[14],所得混合物在冰箱(4℃)中静置两天[15]。将混合物放入转速为5000r/min的离心机中离心15min,收集沉淀。后将离心的沉淀物于真空冷冻干燥器中干燥,得到微生物絮凝剂产品。记录产量。2结果与讨论2.1最佳温度的确定温度对纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的影响结果如图1所示。从图1中可以看出,温度为28~31℃时,其絮凝率处于上升趋势;温度为31~37℃时,其絮凝率处于下降趋势;温度37~40℃时,其絮凝率又略有上升。絮凝率在温度为31℃时最大,为75.9%;絮凝率在温度为37℃时最小,只有52.4%。在28~31℃时,可能是随着温度的升高,菌株生长代谢及细胞酶的活性增强,促进细胞外微生物絮凝剂的合成与分泌,从而使得更多的微生物絮凝剂释放到细胞外,故絮凝率也升高;31~37℃时,可能是菌株细胞酶的活性受到抑制,不利于纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂,故其絮凝率下降。虽然40℃时,其絮凝率有上升趋势,但是温度太高会导致酶失去活性,故不对温度高于40℃研究。因此,选取31℃为微生物絮凝剂的最佳温度。2.2最佳接种量的确定接种量对纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的影响28皮革科学与工程见图2。由图2可知,接种量在2%~10%内,其絮凝率大体处于上升趋势,只有在6%~8%时,其絮凝率才略有下降。接种量为2%时,可能由于接种量小,菌株短期内不能达到一定的菌种浓度,不利于絮凝剂的积累,其絮凝率只有37.7%,因而在接种量在2%~6%时,絮凝率随着接种量的增大而增大。接种量在6%~8%,可能由于接种量较大,使得培养基中菌株初始浓度过高,菌体的生长繁殖需消耗培养基中大量的营养物质,反而不利于絮凝剂的生成[12]。接种量在10%时,絮凝率效果与接种量在6%时相差不大,由于接种量不宜超过10%,故选用6%的接种量为最适接种量。2.3最佳pH的确定由于纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的培养基为弱酸性培养基,自然pH为4.84,故考察pH在3.0、4.0、5.0、6.0和7.0时对纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的影响,结果如图3所示。由图3可知,pH为3.0~5.0时,随着pH的增加,其絮凝率也增加;pH为6.0~7.0时,随着pH的增加,其絮凝率反而减小。pH为5.0和6.0时,其絮凝率最大。不同的细菌有可能适应不同的酸碱环境,pH为3.0~5.0时,可能是菌体细胞酶的活性增强,促进微生物絮凝剂的合成与分泌,从而使得更多的微生物絮凝剂释放到细胞外,故絮凝率也升高;pH为6.0~7.0时,菌体细胞酶的活性降低,抑制菌体生长,因而不利于微生物絮凝剂的生成。故初步确定最适pH为5.0和6.0。2.4最佳培养时间的确定由图4可知,培养时间为12~48h时,其絮凝率呈指数型增长,从13.9%增长到57.6%;培养时间为48~72h时,其絮凝率略有降低的趋势。培养时间为12~48h时,可能菌体处于对数期,充分利用培养基中丰富的营养物质生长、繁殖,微生物絮凝剂随着菌株浓度的增加而不断上升;培养时间为48~72h时,可能由于菌体开始衰亡,产生微生物絮凝剂减少,微生物絮凝剂的积累量趋于稳定,因此48h后絮凝剂的絮凝率下降,即絮凝活性降低。因此,初步确定最适培养时间为48h。2.5正交实验根据温度、培养时间、pH和接种量四种培养条件对纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂活性的影响,得到了提高纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂活性的单因素优化培养条件。故而选用四因素三水平正交表(L9(34)),拟对提高纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂活性的培养条件进行进一步优化。其实验结果和统计数据如表2所示。将表2中因素在第一水平时的絮凝率相加得1,再除以3得均值1,每个因素的的最大值和最小值之差得极差值[16]。值的大小直接表示该水平下絮凝率的高第29卷807060504030252831温度34/℃374043Fig.1Theflocculation图1不同温度下的絮凝率rateunderdifferenttemperatures555045403530024接种量6/%81012Theflocculation图2不同接种量下的絮凝率culturerateundermediumdifferentinoculumsizeof6050403020100234pH5678Fig.3The图flocculation3不同pHrate值下的絮凝率underdifferentpH7060504030201000122436培养时间48/h607284Fig.4The图flocculation4不同培养时间下的絮凝率rateunderdifferentculturetimeFig.2第6期赵阳,等:纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的培养条件优化29Tab.2Orthogonal表2experiment正交实验结果resultsanalysistable试验号 因素 试验结果
A温度/℃ B培养时间/ h C pH D接种量/% 絮凝率/% 1 29 36 5 5 37.22 2 29 48 5.5 6 48.77 3 29 54 6 7 51.17 4 31 36 5.5 7 32.92 5 31 48 6 5 35.27 6 31 54 5 6 54.2 7 33 36 6 6 62.71 8 33 48 5 7 65.39 9 33 54 5.5 5 54.87 K1 137.16 132.85 156.81 127.36 K2 122.39 149.81 136.56 165.68 K3 182.97 160.24 149.15 149.48 k1 45.72 44.28 52.27 42.45 k2 40.8 49.81 45.52 55.23 k60.99 53.41 49.72 49.83 R
3 20.99 9.13 6.75 12.82
Tab.3Effect表comparison3优化前后效果对比beforeandafteroptimization对比项目 培养基
初始培养基 优化培养基
增幅/%
絮凝率/% 46.9 62.1 32.4
絮凝剂产量/(g/L)
0.372 0.436 17.2 低,而值的大小反映出该因素对絮凝率的影响程度。从表2中可知:各个正交实验组合下的絮凝率都有一定的差异;而从值来看,可得知四个因素对纺锤芽孢杆菌产絮凝剂的影响大小次序为:温度>接种量>培养时间>pH,因此,温度对纺锤芽孢杆菌产絮凝剂的影响起主导地位,接种量次之。根据K值的大小可以得知,正交所得出的最优培养条件组合方式为:3312,即温度为33℃、培养时间为54h、pH为5、接种量为6%。2.6初始培养基与优化培养基的效果比较如表3所示,分别测定在两种培养基条件下纺锤芽孢杆菌的絮凝率和最终的絮凝剂产量,发现其絮凝率从46.9%提高到了62.1%,增幅达32.4%,絮凝剂产量从0.372g/L提高到0.436g/L,增幅达17.2%。可以看出,在各种培养条件优化下,絮凝率有一定的提高。3结论(1)采用单因素实验,确定了纺锤芽孢杆菌产絮凝剂的最适温度、接种量、pH和培养时间,最适温度为31℃,最适接种量为6%,最适pH为5和6,最适培养时间为48h。(2)采用L9(34)正交实验,得到培养条件最佳组合为:温度为33℃,接种量为6%、pH为5、培养时间为54h。(3)优化前与优化后的比较:在培养条件优化下制得微生物絮凝剂的絮凝活性从46.9%提高到了62.1%,增长幅度为32.4%;微生物絮凝剂产量从0.372g/L提高到0.436g/L,增长幅度为17.2%。通过对纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂的培养条件进行优化,为该纺锤芽孢杆菌产微生物絮凝剂在制革废水方面的处理应用提供了参考。参考文献:[1]尹倩婷,王刚,张路路,等.牛鞋面革制造中浸灰与铬鞣废水循环利用研究[J].皮革科学与工程,2016,26(1):43-49.[2]陈南南,孙静,张安龙.制革废水处理工艺的特点及其研究发展方向[J].污染防治技术,2009,22(1):56-62.[3]丁绍兰,雷小利,李玲.制革废水氨氮处理技术研究进展[J].皮革科学与工程,2010,20(1):26-28.[4]MorioMiyahara,AkihiroSakamoto,AtsushiKouzuma,etal.Polyironsulfateflocculantasaneffectiveadditiveforim-provingtheperformanceofmicrobialfuelcells[J].Biore-sourceTechnology,2016,221:331-335.[5]GkotsisPK,BatsariEL,PelekaEN,etal.Foulingcontrolinalab-scaleMBRsystem:Comparisonofseveralcommer-ciallyappliedcoagulants[J].JournalofEnvironmentalMan-agement,2017,203(2):838-846.[6]刘兴洁,张光华.有机/无机高分子絮凝剂在制革废水处理中的应用综述[J].中国皮革,2005,34(1):19-21.[7]RongHongyan,GaoBaoyu,LiRuihua,etal.EffectofdosemethodsofasyntheticorganicpolymerandPFConflocpropertiesindyeingwastewatercoagulationprocess[J].ChemicalEngineeringJournal,2014,243:169-175.[8]王小琴,李日强,王爱英,等.微生物絮凝剂与化学絮凝剂的复配研究[J].山西农业科学,2017,45(3):438-442.[9]彭晓文,邱廷省,陈明.微生物絮凝剂的絮凝特性及废水处理研究[J].皮革科学与工程,2004,14(1):43-46.[10]郭帅.微生物絮凝剂的研制及其对染料和重金属废水的处理研究[D].湖南大学,2008.[11]孙莹,季方,周维军,等.Biolog微生物自动鉴定系统对2株大曲菌种的鉴定[J].酿酒,2013,40(3):69-71.[12]罗平,杨林玉,卫宏毅.微生物絮凝剂产生菌的筛选及培养条件优化[J].工业用水与废水,2017,48(1):50-55.[13]杜璇,李斌.高效絮凝剂产生菌的培养和筛选[J].生物技术世界,2013,(3):43-44.[14]李勇如.微生物絮凝剂产生菌的筛选及絮凝性能研究[D].北京工商大学,2012.[15]杨劲峰.成团泛菌产微生物絮凝剂处理石料废水的研究[J].河北化工,2013,36(2):60-62.[16]姜琳琳.利用污泥残渣制备微生物絮凝剂的研究[D].大连理工大学,2009.
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